LUNES
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MARTES
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MIERCOLES
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JUEVES
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VIERNES
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SABADO
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DOMINGO
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OCTUBRE
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Materiales día 1
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12
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13
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14
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15
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16
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17
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Materiales día 2
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19
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20
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21
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22
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Práctica
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24
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Materiales día 3
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26
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27
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28
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29
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Muestreo
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Micro día 1
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NOVIEMBRE
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1
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Micro día 2 (48hs)
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3
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4
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5
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Micro día 3
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7
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Micro día 4 (48hs)
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9
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10
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11
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12
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Micro día 5
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14
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15
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16
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17
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18
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19
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Micro día 6
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21
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22
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23
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24
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25
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26
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27
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28
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29
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30
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PREPARACION
DE MATERIALES
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DIA 1
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Preparación
placas y caldo para practica
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Preparación
de materiales varios (tips, agua estéril, tubos de ensayo)
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DIA 2
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Preparación
placas de APC
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Tubos
de Brila
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Autoclavar
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DIA 3
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Sacar
placas practica de la estufa y pasar a heladera
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Preparar
y autoclavar citrato de Koser
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PRACTICA
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EXPLICACIÓN
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Trabajo en esterilidad
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Características de los medios
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MEDIO LÍQUIDO
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Inoculación
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MEDIO SÓLIDO
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Sembrado con rastrillo
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Sembrado con ansa (estriado)
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ANALISIS
MICROBIOLOGICOS
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DIA 1
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Siembra
de muestras:
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Placas
de APC
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Tubos
de brila
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Placas
para pseudomonas
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Ver
y descartar las placas de práctica
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DIA 2
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Pasar
las muestras de estufa a heladera
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Contar
bacterias en las placas de APC
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Ver
positivos de brila
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Ver
placas de pseudomonas con luz UV
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DIA 3
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Revisar
y descartar las placas de APC
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Sembrar
positivos de brila en citrato de Koser
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Repicar
pseudomonas positivas en cetrimide
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DIA 4
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Pasar
las muestras de estufa a heladera
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Ver
positivos de citrato de Koser
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DIA 5
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Realizar
la prueba del reactivo de Kovacs en los brila positivos
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Extraer
pigmentos de pseudomonas con cloroformo
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Descartar
tubos de brila y placas de pseudomonas
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DIA 6
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Lavar
el material
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Análisis
de los resultados
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