Somos un colectivo transdisciplinario conformado por estudiantes, graduados, docentes y trabajadores de la ciencia, en su mayoría de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales de la UBA. Trabajamos en torno a problemáticas asociadas con el agua en lugares social y ambientalmente relegados. Nos organizamos de manera horizontal y mediante consensos.

En la búsqueda de una ciencia comprometida con las problemáticas y necesidades populares, construimos conocimientos de forma conjunta con organizaciones que trabajan por el cambio social. A su vez, desde el ámbito universitario impulsamos la interacción entre la docencia, la extensión y la investigación de acuerdo a esta manera de entender la ciencia, promoviendo un debate crítico sobre el modelo actual de universidad


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domingo, 28 de abril de 2013

Problemática del Agua

El agua potable según el CAA/ el agua como recurso (3% agua dulce; acuíferos en general; tipos de contaminación)/ el agua como derecho (leyes y acceso al agua)/ el problema del agua en el GBA (distribución de cloacas, atlas ambiental, ppt)/ enfermedades ligadas al agua. 

El agua potable 

Artículo 982 - (Res MSyAS N° 494 del 7.07.94) del Código Alimentario Argentino (CAA)

“Con las denominaciones de Agua potable de suministro público y Agua potable de uso domiciliario, se entiende la que es apta para la alimentación y uso doméstico: no deberá contener substancias o cuerpos extraños de origen biológico, orgánico, inorgánico o radiactivo en tenores tales que la hagan peligrosa para la salud. Deberá presentar sabor agradable y ser prácticamente incolora, inodora, límpida y transparente. 

“El agua potable de uso domiciliario es el agua proveniente de un suministro público, de un pozo o de otra fuente, ubicada en los reservorios o depósitos domiciliarios”. 

Ambas deberán cumplir con las características físicas, químicas y microbiológicas: http://www.anmat.gov.ar/codigoa/Capitulo_XII_Agua_2007-05.pdf

El agua como derecho 

En argentina, el artículo 41 de la Constitución Nacional establece “el derecho a un ambiente sano, equilibrado, apto para el desarrollo humano y para que las actividades productivas satisfagan las necesidades presentes sin comprometer las de las generaciones futuras; y tienen el deber de preservarlo. El daño ambiental generará prioritariamente la obligación de recomponer, según lo establezca la ley, inclusive el derecho al acceso al agua. Las autoridades proveerán a la protección de este derecho, a la utilización racional de los recursos naturales, a la preservación del patrimonio natural y cultural y de la diversidad biológica, y a la información y educación ambientales...”Reforma de 1994

La Declaración Universal de Derechos Humanos de las Naciones Unidas habla del derecho a la vida (artículo 3). 

El artículo 24 de la Convención de los Derechos del Niño dice que los estados deben asegurar el acceso al agua potable para todos los niños (UNICEF). 

El Pacto Internacional de Derechos Económicos, Sociales y Culturales — ratificado por 145 países, incluida la Argentina — señala que el derecho al agua es un derecho humano fundamental. Según el Comité de Derechos Económicos, Sociales y Culturales de la ONU, el agua es un derecho humano "indisolublemente asociado al derecho al más alto nivel posible de salud y al derecho a una vivienda y una alimentación adecuadas". 

Por lo tanto, el agua es un derecho universal ya que sin ella no es posible la vida., y el estado tiene la obligación de garantizarla. 

El agua en el GBA 

Acuíferos 

Las aguas subterráneas son parte del ciclo hidrológico que involucra el movimiento de agua entre la tierra y la atmósfera. Parte del agua que cae por la precipitación se incorpora a los cuerpos de agua (ríos, lagos, océanos), otra parte es absorbida por las plantas, volviendo en parte a la atmósfera por su transpiración. El agua que se infiltra a través del suelo pasa a formar los acuíferos subterráneos. 

La napa freática es el acuífero más cercano a la superficie del suelo. 

Los acuíferos son reservorios de agua dulce de diferente calidad de pureza pero en general apta para consumo. 

En América del Sur está el Sistema Acuífero Guaraní, que es el tercer reservorio de agua dulce del mundo. Las reservas permanentes de agua del Acuífero están en el orden de los 45.000 km³ (45 trillones de metros cúbicos), considerando un espesor medio de 250 m. 

En la Provincia de Corrientes se encuentra ubicado el sistema de lagunas y esteros del Iberá, con una extensión aproximada de 1.300.00 ha. La laguna Iberá es la más grande del sistema (5.500 ha). Este complejo lacustre está en el Sistema Acuífero Guaraní. 

Los gobernantes argentinos venden sin problema las tierras fiscales que rodean una reserva de agua dulce en los esteros del Iberá (Douglas Tompkins) y las tierras que rodean al lago Escondido en La Patagonia (propiedad de Ted Turner). 

Enfermedades ligadas al agua 

Las patologías encuadradas bajo la denominación de enfermedades transmisibles por el agua, constituyen una muestra elocuente del grado de deterioro de la salud de una población, lo cual es claramente evidente en los sectores sociales más afectados por la pobreza, la marginalidad y el desempleo. Estos factores contribuyen a condiciones habitacionales e higiénico-sanitarias deficientes, al hacinamiento y a la desnutrición, aumentando la susceptibilidad a las infecciones bacterianas y parasitarias. 

Los principales factores de contaminación del agua son bacterias, parásitos y compuestos químicos. 

Gran parte de los habitantes del gran buenos aires y de algunos barrios periféricos de la capital federal, viven en dichas condiciones y consumen agua que se encuentra contaminada. 

Contaminación bacteriana 

La contaminación bacteriana se debe principalmente a la filtración de agua de los pozos ciegos y al lixiviado en solución de materiales biológicos y compuestos químicos contaminantes hacia las napas del primer acuífero, el pampeano

El elevado número de pozos ciegos en áreas de alta densidad demográfica, sumado a la falta de recursos para desagotar los pozos ciegos (como consecuencia los pozos ciegos que se llenan son tapados y se abren otros en el mismo terreno), aumenta considerablemente el riesgo de contaminación de las napas utilizadas para la extracción del agua para consumo. 

Contaminación parasitológica 

El agua es un vehículo importante de transmisión de parásitos que afectan la salud de las personas. Entre ellos se encuentran Giardias sp., Entamoeba histolitica, Cryptosporidium sp. (causante de diarrea, vómitos y fiebre), Cyclospora sp., Isospora sp., Acanthamoeba sp., Naegleria sp., Equinococus vermicularis, Taenia saginata, T. solium, así como amebas de vida libre responsables de la meningoencefalitis amebiana. 

Contaminación química 

Los compuestos químicos provenientes de las industrias que vierten sus deshechos en los ríos y arroyos cercanos sin ningún tratamiento previo, se suman a los agentes responsables de enfermedades. La presencia de elevadas concentraciones de nitratos está estrechamente asociada a la metahemoglobinemia, la carcinogénesis y la cianosis infantil (bebés azules). Los metales como el mercurio, el cadmio, el arsénico y el plomo son fácilmente absorbibles y cuando se hallan en concentraciones tóxicas provocan envenenamiento, enfermedades renales, alteraciones neurológicas y son precursores de distintas formas de cáncer. 

En particular, en la cuenca hídrica Matanza-Riachuelo la cual atraviesa varios partidos del conurbano bonaerense, tiene un alto grado de polución, con altas concentraciones de fenoles, hidrocarburos, metales pesados y pesticidas, como subproductos de diferentes industrias. 



Algunas enfermedades relacionadas al consumo de agua contaminada 
  • Leptopirosis 
  • Fiebre de Pontiac y legionellosis, debidas a la bacteria Legionella sp. que puede ser inhalada cuando el agua se evapora. 
  • Parasitosis, siendo el agua vehículo de transmisión de agentes tales como Giardias sp., Entamoeba histolitica, Cryptosporidium sp. (causante de diarrea, vómitos y fiebre), Cyclospora sp., Isospora sp., Acanthamoeba sp., Naegleria sp., Equinococus vermicularis, Taenia saginata, T. solim. Otros parásitos (Diphilobotrium latum o tenia de los peces, Fasciola hepatica, Esquistosoma sp.) necesitan del agua para completar su ciclo biológico. 
  • Cólera, fiebre tifoidea, hepatitis A y poliomielitis: pueden contraerse por ingesta de agua contaminada. 
  • Diarreas infantiles, indicadores de patologías asociadas al consumo de agua no potable. 
  • Infecciones en ojos y piel (sarna, impétigo, tracoma): por contacto con el agua contaminada (por ejemplo, durante el aseo). 
  • Metahemoglobinemia, carcinogenésis y cianosis infantil (bebés azules): se asocian a altas concentraciones de nitratos. Los metales pesados son fácilmente absorbibles y cuando están en altas concentraciones pueden causar envenenamiento, enfermedades renales o bien pueden ser precursores de distintas formas de cáncer.

viernes, 13 de agosto de 2010

Fundamentación teórica

ANÁLISIS MICROBIOLÓGICOS

La contaminación microbiológica del agua puede tener dos aportes:
-          Autóctono, correspondiente a la flora cuyo hábitat es acuático (Pseudomonas, Bacillus, Proteus, cianobacterias, etc)
-          Exógeno, correspondiente al aporte de alguna descarga sobre el agua, como la contaminación cloacal (enterobacterias, enterococos) o del suelo en constante relación con la fuente (Bacillus)

Un análisis microbiológico del agua exige, según el Código Alimentario Argentino, realizar las siguientes determinaciones:

1)   Recuento de bacterias aerobias totales

Se realiza un recuento en superficie sobre medio APC (agar para conteo), el cual no debe exceder las 500 UFC/ml. Debido a que se siembran 0,1 ml de agua por placa, en cada una no deben crecer más de 50 colonias o UFC (Unidades Formadoras de Colonias).
Este dato es importante para saber qué calidad tiene el agua de consumo proveniente de un reservorio, sin embargo no nos informa acerca de si la contaminación es de origen autóctono o exógeno. Por eso es necesario realizar el resto de los análisis y en el caso que sólo este parámetro se encuentre fuera del rango, se deberá exigir la higienización del reservorio y con posterioridad realizar un nuevo recuento.

Protocolo

Día 1

Materiales:


  • Placas de Petri con Agar para conteo (APC): 3 por muestra
  • Rastrillos
  • Placas de vidrio con alcohol
  • Mecheros
  • Tips estériles azules y amarillos
  • Estufa a 37ºC
  • Espadol

  • Algodón
  • Marcador indeleble
  • Cinta de papel
  • Guardapolvo
  • Agua estéril
  • Micropipetas P200 y/o P1000 o pipetas estériles (con perita o propipeta)

Desarrollo:

-          Se siembran tres placas por muestra. Agitar bien las muestras y sembrar 0,1ml de cada una, rastrillar y dejar a 37ºC por 48hs. Incluir un control negativo con agua estéril.
-          Si se sospecha que la muestra puede tener alta cantidad de bacterias aerobias (muestra muy turbia), diluirla (por ej. 1:10 y 1:50) y sembrar 0,1ml de las diluciones.

Día 2

Materiales:

  • Guantes
  • Guardapolvo

Desarrollo:

-          Mirar las placas y fijarse si crecieron hongos, que pueden colonizar toda la placa y dificultar el recuento de colonias. Si es así, tratar de contar las Unidades Formadoras de Colonias (UFCs) ese mismo día (las colonias son chiquitas, pero pueden detectarse por diferente refringencia a contraluz).
-          Guardarlas en heladera para su posterior análisis.

Día 3

Materiales:

  • Bolsa roja para descarte de patogénicos
  • Guantes
  • Guardapolvos

Desarrollo:

-          Recuento de colonias. Si se sembraron 0,1ml, se debe multiplicar el valor por 10, para informar aerobias totales por ml. La muestra se considera contaminada si supera las 500 UFCs/ml en promedio de las placas (para poder promediar las placas, los valores deberían ser similares). Esto representa 50 colonias por placa. Si hay más de 200 colonias, es aconsejable contar UFCs en una placa donde se haya sembrado una muestra más diluida.


2)    Ausencia de Pseudomonas aeruginosa en 100 ml de muestra

El género Pseudomonas se caracterizan por ser bacilos gram negativos, móviles, aerobias estrictas y de metabolismo oxidativo. Algunas especies sintetizan pigmentos, tal como P. aeruginosa, una bacteria autóctona del agua, capaz de producir afecciones en humanos (por ejemplo respiratorias, dermatológicas, etc.) y la única del género que puede crecer a 43ºC. Para detectarla, empleamos un kit, que concentra una muestra de 100ml mediante su filtrado (asistido por una bomba). Como medio de cultivo se utiliza agar cetrimida que contiene altas concentraciones de una sal de amonio cuaternaria (N-cetil-N,N,N-trimetilamonio o cetrimida), lo cual inhibe el crecimiento de otras bacterias de metabolismo oxidativo. Esto lo hace un medio selectivo para el género Pseudomonas. Es además un medio diferencial, debido a que su alta concentración de sales permite ver colonias de P. aeruginosa al provocar la precipitación de un pigmento (piocinanina, detectado con luz UV) producido por esta especie, que da a la colonia un color verdoso. Para verificar que se trata de P. aeruginosa (y diferenciarla de P. fluorescens), las colonias que fluorescen al UV, se repican en agar cetrimida, se incuban a 43ºC y luego se extrae con cloroformo el pigmento de las placas con crecimiento.  

Protocolo
La determinación se realiza a través de una etapa de filtración (para concentrar las muestras) y una de crecimiento en medio selectivo (Agar Cetrimida).

Día 1

Materiales:


  • Monitores para la Filtración
  • Medio de cultivo Cetrimida
  • Bomba de vacío y Kitasato
  • Estufa a 37ºC
  • Flujo Laminar
  • Guantes y guardapolvo


Desarrollo:

-          Armar el frasco del kit (“monitor”) en el dispositivo de filtración.
-          Agitar bien la muestra y volcar 100 ml de la misma en el monitor.
-          Filtrar.
-          Desensamblar la base del monitor y colocarle la tapa. La parte del medio se descarta.
-          Inyectar por abajo el medio de cultivo (Agar Cetrimida). Dar tiempo a que el filtro se embeba bien antes de retirar el dispositivo.
-          Tapar el orificio.
-          Incubar la placa 48hs a 37°C

Día 2 (48hs después)

Materiales:

  • Lámpara UV
  • Guardapolvo
  • Anteojos protectores de luz UV

Desarrollo:

-          Iluminar el filtro con luz UV a 265 nm (¡protegerse los ojos!).
-          Realizar el recuento de colonias fluorescentes
-          Marcarlas para su posterior repique

Día 3

Materiales:


  • Placas de agar cetrimida (3 o 4 por muestra positiva)
  • Bolsa roja para descarte de patogénicos

  • Guardapolvo
  • Guantes
  • Estufa a 43°C

Desarrollo:

-          Repicar las colonias positivas (3 o 4 por muestra) a placas de Agar Cetrimida e incubarlas a 43° por 24-48hs.


Día 4 (48hs después)

Materiales:

  • Guantes
  • Guardapolvo

Desarrollo:

-          Pasar las muestras de la estufa a la heladera para su posterior análisis.



Día 5

Materiales:


  • Tubos de ensayo limpios
  • Cloroformo
  • Bolsa roja para descarte de patogénicos

  • Guantes
  • Guardapolvo
  • Lámpara UV
  • Anteojos protectores de luz UV

Desarrollo:

De las placas que finalmente crecieron:
-          Extracción del pigmento piocianina: Colocar 1-2 ml de cloroformo por placa positiva, mezclar con cuidado y traspasar la fase líquida a un tubo limpio.
-          Observar un color azulado en el líquido obtenido (se puede ver también con luz UV).
-          Descartar las placas en bolsa roja.


3)    Detección de contaminación cloacal

La importancia de determinar contaminación cloacal radica en que su presencia puede ser indicativa de agentes patogénicos que causan enfermedades humanas (cólera, hepatitis, giarditis, poliomielitis, etc.). Dado que estos patógenos pueden encontrarse en baja abundancia y ser difícil su detección, se utilizan distintos indicadores de contaminación cloacal; en nuestro caso, bacterias de origen entérico del grupo Enterobacterias que tienen una supervivencia en agua mayor que los agentes patógenos y son, por consiguiente, más fácilmente detectables.
Al encontrarse diluidas en las muestras de agua, se deben aplicar para su determinación métodos estadísticos como el del “Número Más Probable” (NMP), que utiliza grandes volúmenes de muestra. En nuestro caso usaremos el método Wilson, para calcular el número de bacterias coliformes cada 100 ml de muestra. Se define bacteria coliforme como aquella enterobacteria capaz de fermentar lactosa, liberando ácido y gas (las no coliformes también fermentan y producen ácido pero no gas). El medio de cultivo utilizado (caldo Brila Fluorocult) posee lactosa (fuente de carbono fermentable), bilis de buey (que es selectiva para enterobacterias), triptofano y 4-metilumbeliferil-b-D-glucurónido o MUG (metabolitos que pueden ayudar a la detección de Escherichia coli, bacteria coliforme de origen fecal). Aquellos tubos con crecimiento y gas se cultivan en caldo citrato de Koser, que permite detectar por crecimiento selectivo a bacterias coliformes no fecales, por poseer citrato como única fuente de carbono el cual no puede ser utilizado por coliformes de origen fecal.

Protocolo

Día 1

Materiales:

  • Tubos de ensayo grandes con 10ml de caldo Brila Fluorocult 2X y campana de Durham: al menos 3 por muestra (preferentemente más para diluciones y control negativo).
  • Tubos de ensayo chicos con 5ml de caldo Brila Fluorocult 1X y campana de Durham: al menos 6 por muestra (preferentemente más para diluciones y control negativo).

  • Pipetas estériles de 10ml
  • Peritas o propipetas
  • Micropipetas P1000 y P200
  • Tips estériles azules y amarillos
  • Estufa a 37ºC
  • Espadol y algodón
  • Marcador indeleble
  • Cinta de papel

  • Guardapolvo
  • Bolsa roja para descarte de patogénicos
  • Agua estéril

Desarrollo:

-          Agitar enérgicamente la muestra.
-          Si la muestra es demasiado turbia, es aconsejable diluirla (por ej. 1:10 y 1:50) y sembrarlas junto a la muestra sin diluir.
-          Sembrar por cada muestra:
o   3 tubos de 10ml de caldo Brila 2X con 10ml de muestra.
o   3 tubos de 5ml de caldo Brila 1X con 1ml de muestra.
o   3 tubos de 5ml de caldo Brila 1X con 0,1ml de muestra.
Agitar la muestra entre siembra y siembra para evitar que se depositen las bacterias. Incluir un juego de tubos sembrados con agua estéril, como control negativo.
-          Incubar 48hs a 37ºC sin agitación.


Día 2 (48hs después)

Materiales:


  • Espadol y algodón
  • Marcador indeleble
  • Cinta de papel
  • Guardapolvo


Desarrollo:

-          Observar los tubos y anotar el número de positivos para coliformes por muestra (crecimiento y gas en al menos 1/3 de la campana). Los no coliformes muestran crecimiento pero no gas.
-          Para que el ensayo sea válido, la mayoría de los tubos de menor concentración deben ser negativos para gas y positivos para crecimiento. Descartar las diluciones que no cumplan esta condición.
-          Determinar con la tabla el número más  probable (X) de coliformes totales cada 100ml de muestra.
-          Guardar los tubos de Brila positivos para su análisis posterior

Día 3

Materiales:


  • Tubos de caldo citrato de Koser: 1 por tubo de caldo Brila sembrado (grande o chico)
  • Ansas rectas
  • Estufa a 37ºC

  • Espadol y algodón
  • Marcador indeleble
  • Cinta de papel
  • Guardapolvo
  • Guantes

Desarrollo:

-          De los cultivos positivos para crecimiento y gas, se siembra una ansada en caldo citrato de Koser. Usar ansa recta para llevar la menor cantidad posible de medio Brila al caldo citrato (que sólo debe tener citrato como fuente de carbono). Incluir un control negativo con un caldo Brila que no muestre crecimiento (o agua estéril).
-          Incubar a 37ºC durante 48hs.
-          Guardar los tubos de Brila positivos para su análisis posterior

Día 4 (48hs después)

Materiales:

  • Guantes
  • Guardapolvo
  • Bolsa roja para descarte de patogénicos

Desarrollo:

-          Agitar y observar los tubos de caldo citrato de Koser. Se consideran coliformes no fecales (pueden crecer con citrato como única fuente de carbono) si hay turbidez.
-          Obtener el número más probable (NMP) de coliformes no fecales (b).


Día 5

Materiales:


  • Reactivo de Kovacs
  • Lámpara UV
  • Micropipetas P1000
  • Tips estériles azules
  • Espadol
  • Algodón
  • Marcador indeleble
  • Cinta de papel
  • Guardapolvo
  • Guantes
  • Bolsa roja para descarte de patogénicos


Desarrollo:

-          Mirar los tubos positivos de Brila con luz UV. Si se observa fluorescencia azul (producida por un producto de clivaje del MUG) se consideran positivos para coliformes fecales y Escherichia coli.
-          Para corroborar que sea E. coli, se realiza la prueba del indol (que detecta productos metabólicos del triptofano), agregando 0,1ml de reactivo de Kovacs. Si se observa viraje al rojo en la superficie, es positivo. NO AGITAR.
Se puede ir agregando reactivo si con 0,1 ml no se alcanza a ver el color del mismo.
-          Obtener el número más probable (NMP) de coliformes fecales (a).
-          Corregir los datos según la siguiente fórmula:
o   #Coliformes fecales/100ml = X * a / (a+b)
o   #Coliformes no fecales/100ml = X * b / (a+b)